原代細胞培養之分離注意事項1、組織塊培養法1）組織塊接種后，在觀察和移動的過程中，注意不要引起液體的振蕩。要避免經常翻動和振動，否則組織塊不易附著于瓶壁上或附著后也會脫落飄起。2）加入的培養液不宜過多，避免浸泡的組織塊受輕微的波動而脫落下來。3）當細胞向外遷徙出來后要注意記錄并去除漂浮的組織塊和殘留的細胞，它們產生的有毒物質會影響原代細胞的生長。4）為促進組織塊盡快粘貼在培養瓶皿上，可以在種植前先將膠原薄層涂在培養瓶底壁上。2、貼壁型原代細胞1)原代培養的分離細胞在初次接觸體外環境時，它們之間會互相影響，在這些細胞之間能產生一些促生長的活性物質，使細胞彼此互相促進存活和生長。如果接種的細胞密度過低，細胞之間的促生長作用很小，也很難使細胞適應從體內的組織環境到被分散后進入生存環境的變化過程。如果接種的細胞密度過大，會導致營養物質供應不足，代謝廢物積累較快需要經常換液和傳代。2）適當增大原代培養接種的細胞密度，給培養的細胞提供更多的類似于在體內時細胞之間的相互作用，會極大提高原代培養的細胞在體外存活率。待細胞適應體外環境后進行傳代培養時再以較低的密度接種和培養。3）盡快使接種的細胞貼壁。名稱：人臍靜脈血管平滑肌細胞 Human umbilical vein vascular smooth muscle cell 貨號：PC-H-18103。湖南豚鼠原代細胞實驗

[1]細胞培養營養條件1．培養基細胞培養基包含細胞生長所需的各種營養物質，包括碳水化合物、氨基酸、無機鹽、維生素等。針對不同細胞的營養需求，有多種合成培養基可供選擇，如EBSS、Eagle、MEM、RPMll640、DMEM等。2．其他添加成分在各種合成培養基提供基礎營養物質之外，還需根據不同細胞和不同的培養目的添加其他成分，如血清、因子等。血清提供的是細胞外基質、生長因子和轉鐵蛋白等重要物質，常用的是胎牛血清。要根據不同的細胞和不同的研究目的決定添加血清的比例。10%～20%的血清能維持細胞較快的生長增殖速度，稱為生長培養液；為維持細胞緩慢生長或不死，添加2%～5%的血清即可，稱為維持培養液。但血清中也存在有害于細胞生長和繁殖的物質，如補體、免疫球蛋白和一些生長抑制因子；成分不明確，影響對結果的分析；不同動物、不同批次的血清活性差別較大，影響培養效果的穩定性。谷氨酰胺是細胞生長重要的氮源，在細胞生長代謝過程中起重要作用，但由于谷氨酰胺在溶液中很不穩定容易降解，4℃下放置7天即可分解約50%，故谷氨酰胺需在使用前添加。為防止污染，培養基中還需添加一定量的常用名稱、濃度及敏感性如下表。小鼠原代細胞外包細胞操作都需嚴格按照無菌操作進行。

充分去除組織表面的血漬和其它異物。2、將組織轉入另一無菌的培養皿，切去多余組織如脂肪或壞死組織，用無菌刀將組織切成1mm3小塊。3、用無菌彎頭鑷將組織塊轉入50ml的無菌離心管中，讓組織塊沉淀，吸去多余液體，加入10mlbuffera，充分混勻，300g離心5分鐘，棄上清，如此重復操作3次。4、用10mlbufferb重懸組織塊，將組織塊懸液轉移至25cm2無菌培養瓶中，放置co2培養箱中，37℃培養24小時。5用強力吹打使組織分散，將懸液移入15ml無菌離心管，500g離心5分鐘，棄上清。6、取10mlbufferc懸浮組織塊，置于37℃水浴中30分鐘，每10分鐘搖動一次，讓組織塊沉淀。7、取上清放入50ml離心管中，加入1mlbufferd,終止反應。8、重復步驟6、7兩次。9、將吸出全部上清進行離心，500g離心5分鐘，棄上清。10、取2mlbuffere懸浮細胞，用血球計數板或電子記數儀計數細胞，并檢測細胞活性。11、懸浮細胞用相應的原代細胞培養基稀釋，使每毫升培養基中含有1×106個細胞，接種培養瓶中，大約每平方厘米2×105個細胞。12、每隔2-4天更換一次培養基（以ph變化為標準），觀察細胞生長情況。

視實驗目的而定），經過一定的處理（如消化分散細胞、分離等）后接入培養器皿中，這一過程稱為取材。如是細胞株的擴大培養則無取材這一過程。機體取出的組織細胞的培養稱為原代培養。理論上講各種動物和人體內的所有組織都可以用于培養，實際上幼體組織（尤其是胚胎組織）比成年個體的組織容易培養，分化程度低的組織比分化高的容易培養，組織比正常組織容易培養。取材后應立即處理，盡快培養，因故不能馬上培養時，可將組織塊切成黃豆般大的小塊，置4℃的培養液中保存。取組織時應嚴格保持無菌，同時也要避免接觸其他的有害物質。取病理組織和皮膚及消化道上皮細胞時容易帶菌，為減少污染可用素處理。由組織并分離分散細胞的方法可參閱有關文獻。三、培養將取得的組織細胞接入培養瓶或培養板中的過程稱為培養。如系組織塊培養，則直接將組織塊接入培養器皿底部，幾個小時后組織塊可貼牢在底部，再加入培養基。如系細胞培養，一般應在接入培養器皿之前進行細胞計數，按要求以一定的量（以每毫升細胞數表示）接入培養器皿并直接加入培養基。細胞進入培養器皿后，立即放入培養箱中，使細胞盡早進入生長狀態。正在培養中的細胞應每隔一定時間觀察一次。在進行血管內皮細胞實驗時，通常選用的細胞模型為人臍靜脈內皮細胞。

經過長時間、連續的傳代培養后，細胞系隨著代數的增加，細胞的基因型和表型都有可能發生改變。需要指出的是，在不同的科研小組中這些術語的定義會有所不同。許多研究員不用細胞系這個詞表示細胞群，除非細胞經過了遺傳改造。2、倍增和代數有什么區別？倍增是培養物中細胞總數的翻倍，通常是指細胞指數或對數生長期。代數是指細胞群從培養瓶中移出，傳代培養過程的次數，傳代培養的目的，是使細胞處于低密度以刺激其進一步生長。3、接收到的凍存細胞該如何處理？收到包裝箱后，立即將凍存細胞從干冰移入液氮中凍存。此過程盡量快，以避免升溫。不要將細胞儲存在-80℃，這樣會對細胞造成不可挽回的傷害。4、凍存的細胞該如何開始培養？(1)將一管細胞從液氮罐中取出，注意保護手和眼睛。(2)將凍存管快速的放入37℃水浴中，輕輕握住并旋轉，直到管內物體完全融化。(3)將凍存管立即從水浴中拿出，擦干，轉入無菌環境。(4)用70％的酒精沖洗凍存管，然后擦去多余酒精。(5)打開蓋子，注意手指不要碰到里面的螺紋（注意，由于凍存管有負壓，開蓋時可能會有少量溢出，這是正常現象）。(6)用多聚賴氨酸（或參照說明書）包被培養瓶。多數細胞推薦的接種密度為每平方厘米5000個細胞。。將動物某組織在合適的操作中培養出特定細胞，使得目的細胞得以生存、生長和繁殖，稱為原代細胞分離培養。西藏小鼠原代細胞分離

臍帶是哺乳類連接胎兒和胎盤的管狀結構。湖南豚鼠原代細胞實驗

導語對于大部分科研人員來說，研究中一般用到均是現成的細胞系/株，我們只需要：進行細胞傳代和保種。然而，這些細胞系常常由于體外長期培養，而丟失原有生物學特性，對藥物處理的反應差距越來越大。因此，原代細胞的地位日漸凸顯，Paper中若有了原代細胞的數據都會添色不少。然而，就小編親生經歷，原代細胞分離著實是個技術活，結合自身經驗，為大家介紹：組織和正常組織的原代細胞的分離與培養方法。原代細胞的基本知識1.什么是原代細胞培養?原代細胞（Primarycells）：是指直接從機體取出的組織或細胞獲得單個細胞并在體外進行培養的細胞。這里的組織主要指：組織、外周血及胚胎等。原代細胞培養：由于原代細胞生長緩慢，繁殖一定的代數停止生長（一般10代以內）。所以一般認為：培養的原代的第1和傳代到第10代以內的細胞統稱為原代細胞培養。2.原代細胞與細胞系（celllines）的區別原代細胞和細胞系的比較：PrimarycellsCelllines增殖能力較弱強繁殖代數一般只能傳10代以內無限增殖，50代左右遺傳物質完整性遺傳物質未改變遺傳物質發生改變生物特性接近臨床樣本偏離臨床樣本培養容易程度比較復雜簡單。湖南豚鼠原代細胞實驗