MAT 法熱原檢測(cè)標(biāo)曲采用非倍比稀釋，而非 1-0.5-0.25 的倍比稀釋，主要優(yōu)勢(shì)在于提升標(biāo)曲準(zhǔn)確性與適用性，避免稀釋誤差影響。一是可密集覆蓋關(guān)鍵濃度區(qū)間：熱原檢測(cè)的重點(diǎn)關(guān)注區(qū)為低濃度拐點(diǎn)（如 0.0125-0.1EU/mL）與高濃度平臺(tái)區(qū)（如 0.5-1EU/mL），非倍比稀釋可在這些區(qū)間設(shè)置更多濃度點(diǎn)（如 0.0125、0.025、0.05、0.1、0.25、0.5、1EU/mL），提升曲線擬合精度，而倍比稀釋低濃度點(diǎn)少，易導(dǎo)致低濃度熱原定量不準(zhǔn)。二是降低稀釋誤差累積：倍比稀釋需連續(xù)稀釋（如 1EU/mL→0.5EU/mL→0.25EU/mL），每一步誤差會(huì)累積，導(dǎo)致低濃度點(diǎn)實(shí)際濃度偏離理論值；非倍比稀釋通過單獨(dú)配制每個(gè)濃度點(diǎn)（如直接用標(biāo)準(zhǔn)品配制 0.025EU/mL），避免誤差累積，提升標(biāo)曲可靠性。三是適配不同樣品濃度：非倍比稀釋可根據(jù)樣品預(yù)期濃度調(diào)整標(biāo)曲范圍，如樣品預(yù)期濃度 0.05EU/mL，可增加 0.025、0.05、0.1EU/mL 點(diǎn)，確保樣品濃度落在標(biāo)曲線性區(qū)，而倍比稀釋范圍固定，靈活性差。這些優(yōu)勢(shì)使非倍比稀釋成為 MAT 法標(biāo)曲配制的優(yōu)先選擇方式。

熱原是能引發(fā)恒溫動(dòng)物體溫異常升高的物質(zhì)總稱，主要成分為細(xì)菌內(nèi)毒素（革蘭氏陰性菌脂多糖 LPS），同時(shí)涵蓋病毒、真菌毒素、支原體等非內(nèi)毒素?zé)嵩錂z測(cè)是保障藥品與醫(yī)療器械安全性的關(guān)鍵環(huán)節(jié)。當(dāng)前熱原檢測(cè)已形成 “特異性檢測(cè) + 廣譜篩查” 互補(bǔ)的完整體系：以鱟試驗(yàn)法（含天然 LAL 與重組 rCR/rFC 試劑）作為細(xì)菌內(nèi)毒素的特異性檢測(cè)手段，憑借 fg 級(jí)靈敏度成為制藥行業(yè)常規(guī)質(zhì)控方法，可通過凝膠法實(shí)現(xiàn)定性、動(dòng)態(tài)濁度 / 顯色法完成定量；以家兔熱原試驗(yàn)作為傳統(tǒng)廣譜篩查方法，雖操作繁瑣（需預(yù)試篩選基礎(chǔ)體溫穩(wěn)定家兔，正式試驗(yàn)觀察 3 小時(shí)體溫變化），但仍是放射性質(zhì)的藥物、血液制品等高風(fēng)險(xiǎn)產(chǎn)品排除非內(nèi)毒素?zé)嵩难a(bǔ)充手段；以單核細(xì)胞活化反應(yīng)測(cè)定（MAT）作為新興全熱原檢測(cè)技術(shù)，利用人源單核細(xì)胞（如 THP-1 細(xì)胞）釋放 IL-6、TNF-α 等細(xì)胞因子的特性，可同時(shí)識(shí)別內(nèi)毒素與非內(nèi)毒素?zé)嵩鹾弦呙纭⒒蛑委煯a(chǎn)品等對(duì)風(fēng)險(xiǎn)控制的需求。三種方法協(xié)同應(yīng)用，從原料入廠到成品放行構(gòu)建全流程熱原防控網(wǎng)絡(luò)，既保證對(duì)內(nèi)毒素的準(zhǔn)確監(jiān)控，又避免非內(nèi)毒素?zé)嵩倪z漏風(fēng)險(xiǎn)。

在單核細(xì)胞活化試驗(yàn)（MAT）的熱原檢測(cè)中，IL-6 被確定為關(guān)鍵檢測(cè)指標(biāo)，而非 IL-1β 或 TNF-α，主要源于其在穩(wěn)定性、生物學(xué)關(guān)聯(lián)性及商業(yè)化應(yīng)用上的優(yōu)勢(shì)。從穩(wěn)定性來看，IL-6 在體外培養(yǎng)環(huán)境中受個(gè)體免疫狀態(tài)影響較小，半衰期更長(zhǎng)，實(shí)驗(yàn)重復(fù)性更優(yōu)，且檢測(cè)靈敏度高，能準(zhǔn)確定量熱原污染水平；而 TNF-α 和 IL-1β 產(chǎn)生時(shí)間短、表達(dá)量低，還易被蛋白酶降解，導(dǎo)致檢測(cè)信號(hào)波動(dòng)大，難以標(biāo)準(zhǔn)化。從生物學(xué)特性而言，IL-6 是先天免疫反應(yīng)的炎癥介質(zhì)，可通過活化 JAK-STAT 和 NF-κB 通路驅(qū)動(dòng)急性期反應(yīng)，如誘導(dǎo)大腦產(chǎn)生前列腺素 E2（PGE2）觸發(fā)發(fā)熱，與熱原的致熱機(jī)制直接關(guān)聯(lián)，是公認(rèn)的發(fā)熱標(biāo)志物。同時(shí)，MAT 法熱原檢測(cè)會(huì)輔以 IL-1β 和 TNF-α 監(jiān)測(cè) ——IL-1β 反映單核細(xì)胞活化程度，TNF-α 提示炎癥放大效應(yīng)，形成多因子協(xié)同體系。此外，IL-6 的 ELISA 試劑盒市場(chǎng)成熟度高、跨平臺(tái)兼容性強(qiáng)，而 IL-1β 和 TNF-α 的檢測(cè)方法在靈敏度和標(biāo)準(zhǔn)化上仍有局限，進(jìn)一步奠定了 IL-6 的重要地位。

熱原檢測(cè)技術(shù)自 20 世紀(jì)初問世以來，經(jīng)歷了 “動(dòng)物試驗(yàn)→體外生化檢測(cè)→細(xì)胞生物學(xué)檢測(cè)” 的三次關(guān)鍵變革，每一次變革均推動(dòng)檢測(cè)效率、準(zhǔn)確性與全面性的提升。20 世紀(jì)初至中期，熱原檢測(cè)方法只有家兔熱原試驗(yàn)，通過觀察家兔體溫變化篩查熱原，雖實(shí)現(xiàn)了廣譜檢測(cè)，但存在動(dòng)物成本高、操作繁瑣、靈敏度低、種屬差異大等局限，難以滿足制藥行業(yè)快速發(fā)展需求。20 世紀(jì) 60 年代，鱟試驗(yàn)法（LAL 法）的發(fā)明開啟了熱原檢測(cè)的 “體外生化時(shí)代”，利用鱟血變形細(xì)胞裂解物的凝血級(jí)聯(lián)反應(yīng)檢測(cè)細(xì)菌內(nèi)毒素，靈敏度提升至 ng 級(jí)，檢測(cè)時(shí)間縮短至 1-2 小時(shí)，迅速成為制藥行業(yè)常規(guī)質(zhì)控方法；但該方法依賴鱟資源，易受 β- 葡聚糖干擾，且只能檢測(cè)內(nèi)毒素，無法覆蓋非內(nèi)毒素?zé)嵩?1 世紀(jì)以來，重組技術(shù)與細(xì)胞生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展推動(dòng)熱原檢測(cè)進(jìn)入 “全熱原管控時(shí)代”：重組級(jí)聯(lián)試劑（rCR）與重組 C 因子試劑（rFC）通過基因工程技術(shù)制備，擺脫對(duì)鱟資源的依賴，消除葡聚糖干擾，實(shí)現(xiàn)標(biāo)準(zhǔn)化生產(chǎn)；單核細(xì)胞活化反應(yīng)測(cè)定（MAT）利用人源單核細(xì)胞檢測(cè)全類型熱原，填補(bǔ)非內(nèi)毒素?zé)嵩瓩z測(cè)空白，且結(jié)果更貼近人體實(shí)際反應(yīng)。

PyroSHENTEK^®熱原檢測(cè)試劑盒（MAT法）已完成 25 個(gè)品種樣品的檢測(cè)驗(yàn)證，覆蓋單抗類、疫苗類、基因工程類、血液制品類、生化藥品類與注射液，結(jié)果顯示其適配性范圍廣但需關(guān)注部分樣品的干擾。疫苗類（如麻腮風(fēng)聯(lián)合減毒活疫苗、人用狂犬病疫苗）、基因工程類（重組人促紅素、干擾素 α-2b）、血液制品類（人血白蛋白、凝血因子 Ⅷ）與注射液（生理鹽水、琥珀酰明膠）的加標(biāo)回收率均在 50%-200% 范圍內(nèi)，無明顯干擾，檢測(cè)結(jié)果可靠。單抗類（如貝伐珠單抗、阿達(dá)木單抗）、中藥注射液等樣品雖存在不同程度的抑制作用，需通過提高稀釋倍數(shù)（如稀釋至 MVD 上限）、超聲處理或添加中和劑消除抑制，優(yōu)化后回收率均可達(dá)標(biāo)。此外，MAT 法可有效檢測(cè)非內(nèi)毒素?zé)嵩鐚?duì)貝伐珠單抗注射液中添加的酵母多糖（Zymosan，200μg/mL）、脂磷壁酸（LTA，10μg/mL），回收率分別達(dá) 113%、66.8%，證明其可解決傳統(tǒng)鱟試劑漏檢非內(nèi)毒素?zé)嵩膯栴}，尤其適用于高風(fēng)險(xiǎn)生物制品的熱原防控。