導語對于大部分科研人員來說，研究中一般用到均是現成的細胞系/株，我們只需要：進行細胞傳代和保種。然而，這些細胞系常常由于體外長期培養，而丟失原有生物學特性，對藥物處理的反應差距越來越大。因此，原代細胞的地位日漸凸顯，Paper中若有了原代細胞的數據都會添色不少。然而，就小編親生經歷，原代細胞分離著實是個技術活，我們就結合自身經驗，為大家介紹：組織和正常組織的原代細胞的分離與培養方法。部分：原代細胞的基本知識1.什么是原代細胞培養?原代細胞（Primarycells）：是指直接從機體取出的組織或細胞獲得單個細胞并在體外進行培養的細胞。這里的組織主要指：組織、外周血及胚胎等。原代細胞培養：由于原代細胞生長緩慢，繁殖一定的代數停止生長（一般10代以內）。所以一般認為：培養的原代的第1和傳代到第10代以內的細胞統稱為原代細胞培養。2.原代細胞與細胞系（celllines）的區別原代細胞和細胞系的比較：PrimarycellsCelllines增殖能力較弱強繁殖代數一般只能傳10代以內無限增殖，50代左右遺傳物質完整性遺傳物質未改變遺傳物質發生改變生物特性接近臨床樣本偏離臨床樣本培養容易程度比較復雜簡單。血管疾病發生和發展的一個主要因素是由于血管平滑肌細胞轉變成為了具有繁殖能力的表型。實驗原代細胞技術

如果接種的細胞密度過低，細胞之間的促生長作用很小，也很難使細胞適應從體內的組織環境到被分散后進入生存環境的變化過程。如果接種的細胞密度過大，會導致營養物質供應不足，代謝廢物積累較快需要經常換液和傳代。2）適當增大原代培養接種的細胞密度，給培養的細胞提供更多的類似于在體內時細胞之間的相互作用，會極大提高原代培養的細胞在體外存活率。待細胞適應體外環境后進行傳代培養時再以較低的密度接種和培養。3）盡快使接種的細胞貼壁，是決定培養能否成功的關鍵。可以在接種后先將培養瓶置培養箱內培養3h到5h，待細胞貼壁后，再補足培養液繼續培養。3、懸浮型原代細胞1）必須保持細胞的懸浮狀態。可以通過增加培養液的黏度來幫助細胞呈懸浮狀態，如給培養液中加入低濃度的透明質酸復合物。在有攪拌裝置的培養器皿內加入培養液是，以5ml為限度，否則攪拌時會產生氣泡對細胞造成傷害。使用這種方式需注意勿使攪拌速度過快，否則即可使培養液溢出又容易造成污染。如果培養液的量在5ml以下，可以采用旋轉瓶培養。給懸浮培養的細胞換液時要注意不要吸出細胞。2）能夠進行懸浮培養的細胞，其生命力一般都比較旺盛，體外分裂增殖的速度較快，營養成分消耗大。內蒙古組織原代細胞外包采用波形蛋白（Vimentin）免疫熒光染色鑒定，結果顯示波形蛋白（Vimentin）免疫熒光染色鑒定呈現陽性。

原標題：原代細胞培養難？有這一篇就夠了！導語原代細胞培養也叫初代培養，是建立細胞系的，其步驟包括取材→分離→培養和維持，給大家帶來原代細胞培養的一些技巧，希望大家能有所收獲！原代細胞培養原代細胞培養的應用1、為研究生物體細胞的生長、代謝、繁殖提供有力的手段；2、為傳代培養創造條件；3、服務于臨床實踐，用于藥物篩選等。原代細胞培養之取材取材作為原代細胞培養過程中的至關重要，以下幾種取材技術，你都用過哪些方法呢？兔髓核原代細胞培養之分離注意事項1、組織塊培養法1）組織塊接種后，在觀察和移動的過程中，注意不要引起液體的振蕩。要避免經常翻動和振動，否則組織塊不易附著于瓶壁上或附著后也會脫落飄起。2）加入的培養液不宜過多，避免浸泡的組織塊受輕微的波動而脫落下來。3）當細胞向外遷徙出來后要注意記錄并去除漂浮的組織塊和殘留的細胞，它們產生的有毒物質會影響原代細胞的生長。4）為促進組織塊盡快粘貼在培養瓶皿上，可以在種植前先將膠原薄層涂在培養瓶底壁上。2、貼壁型原代細胞1)原代培養的分離細胞在初次接觸體外環境時，它們之間會互相影響，在這些細胞之間能產生一些促生長的活性物質，使細胞彼此互相促進存活和生長。

換液時間隔一般較短。原代細胞培養問題解答1、原代細胞與細胞系有什么區別？根據傳統定義，自組織收獲和接種的細胞被稱為原代細胞[Freshney,.(1987)..(NewYork,.)].這類細胞直接從組織分離，生命周期有限，經數次傳代后會逐漸停止生長。原代細胞在有限的生命周期內需掌握好細胞的生長空間，以保持細胞群中基因型和表型的一致性。細胞系是不斷生長、分化的細胞群，因其經過遺傳改造，致使其具有無限增長的潛能。體外生長的細胞系用于醫療或科研。但實際上，經過長時間、連續的傳代培養后，細胞系隨著代數的增加，細胞的基因型和表型都有可能發生改變。需要指出的是，在不同的科研小組中這些術語的定義會有所不同。許多研究員不用細胞系這個詞表示細胞群，除非細胞經過了遺傳改造。2、倍增和代數有什么區別？倍增是培養物中細胞總數的翻倍，通常是指細胞指數或對數生長期。代數是指細胞群從培養瓶中移出，傳代培養過程的次數，傳代培養的目的，是使細胞處于低密度以刺激其進一步生長。3、接收到的凍存細胞該如何處理？收到包裝箱后，立即將凍存細胞從干冰移入液氮中凍存。此過程盡量快，以避免升溫。不要將細胞儲存在-80℃，這樣會對細胞造成不可挽回的傷害。臍帶間充質干細胞是指存在于新生兒臍帶組織中的一種多功能干細胞。

凍存過程中保護劑的選用、細胞密度、降溫速度及復蘇時溫度、融化速度等都對細胞活力有影響。[4]細胞培養具體步驟編輯一、細胞復蘇將凍存細胞從液氮中取出后，在37℃水浴鍋內不斷搖動促進其融化。移入15ml離心管中，加入10ml預熱的DMEM完全培養基，輕輕吹勻，離心，2000rpmX2min，棄上清液。加入10mlDMEM培養基清洗，棄上清液。加入10mlDMEM完全培養基，輕輕吹打，接種于10cm盤中，在含5%CO2的細胞培養箱中培養。二、細胞傳代細胞密度達到80%~90%時．去培養基，10mlPBS清洗2次。加入3ml含0．25%EDTA的胰蛋白酶，放入細胞培養箱3min。加人1mlDMEM完全培養基終止胰酶消化，轉移至15ml離心管。加入10mlPBS清洗細胞培養盤，轉移至15ml離心管，2000rpmX2min，棄上清液。再加入10mlPBS（經高壓滅菌，保存于40C），吹勻，吸取10微升進行計數，按照1×105/盤接種，在含5%CO2的細胞培養箱繼續培養。三、細胞凍存細胞密度達到80%～90%時，去培養基，10mlPBS清洗2次。加入3ml含，放入細胞培養箱3min。加入lmlDMEM完全培養基終止胰酶消化，轉移至15ml離心管。加入10mlPBS清洗細胞培養盤，轉移至15ml離心管，2000rpmX2min，棄上清液。加入1ml凍存液（90%血清，10%DMSO），放入凍存盒內。常規轉染技術可以分為兩大類，一類為瞬時轉染，一類為穩定轉染（構建穩定細胞株）。湖北C57原代細胞實驗室

人臍靜脈血管平滑肌細胞分離自臍帶組織，是臍靜脈的重要結構之一。實驗原代細胞技術

充分去除組織表面的血漬和其它異物。2、將組織轉入另一無菌的培養皿，切去多余組織如脂肪或壞死組織，用無菌刀將組織切成1mm3小塊。3、用無菌彎頭鑷將組織塊轉入50ml的無菌離心管中，讓組織塊沉淀，吸去多余液體，加入10mlbuffera，充分混勻，300g離心5分鐘，棄上清，如此重復操作3次。4、用10mlbufferb重懸組織塊，將組織塊懸液轉移至25cm2無菌培養瓶中，放置co2培養箱中，37℃培養24小時。5用強力吹打使組織分散，將懸液移入15ml無菌離心管，500g離心5分鐘，棄上清。6、取10mlbufferc懸浮組織塊，置于37℃水浴中30分鐘，每10分鐘搖動一次，讓組織塊沉淀。7、取上清放入50ml離心管中，加入1mlbufferd,終止反應。8、重復步驟6、7兩次。9、將吸出全部上清進行離心，500g離心5分鐘，棄上清。10、取2mlbuffere懸浮細胞，用血球計數板或電子記數儀計數細胞，并檢測細胞活性。11、懸浮細胞用相應的原代細胞培養基稀釋，使每毫升培養基中含有1×106個細胞，接種培養瓶中，大約每平方厘米2×105個細胞。12、每隔2-4天更換一次培養基（以ph變化為標準），觀察細胞生長情況。獲取更多公司信息及技術文章請關注我們的微信公眾號原代細胞。實驗原代細胞技術