熱原是指微量即可引發(fā)恒溫動物體溫異常升高的物質(zhì)，分為內(nèi)源性（如細(xì)胞因子）與外源性兩類，外源性熱原又涵蓋微生物來源（革蘭氏陰性菌脂多糖 LPS、革蘭氏陽性菌脂磷壁酸 LTA、病毒、真菌等）與非微生物來源（灰塵、橡膠降解產(chǎn)物等）。傳統(tǒng)細(xì)菌內(nèi)毒素檢查法（BET）只能檢測革蘭氏陰性菌的 LPS，無法覆蓋非內(nèi)毒素?zé)嵩鴨魏思?xì)胞活化試驗(yàn)（MAT）可彌補(bǔ)這一缺陷。其原理是：熱原通過活化單核細(xì)胞表面的 Toll 樣受體（TLR，如 TLR4 識別 LPS、TLR2/TLR6 識別 LTA），啟動先天免疫反應(yīng)，促使細(xì)胞釋放 IL-6、TNF-α 等促炎細(xì)胞因子；隨后采用 ELISA 法檢測 IL-6 濃度，結(jié)合 LPS 標(biāo)準(zhǔn)曲線推算樣品中總熱原含量，實(shí)現(xiàn)對內(nèi)毒素與非內(nèi)毒素?zé)嵩耐綑z測，契合《中國藥典》9301 指導(dǎo)原則中 全場景防控?zé)嵩L(fēng)險(xiǎn)”的要求。

生物制品（如單克隆抗體、重組蛋白、細(xì)胞因子）因基質(zhì)成分復(fù)雜（含高濃度蛋白質(zhì)、螯合劑、表面活性劑、緩沖鹽等），在熱原檢測過程中易出現(xiàn)“反應(yīng)抑制”或“非特異性增強(qiáng)”現(xiàn)象，嚴(yán)重影響檢測結(jié)果準(zhǔn)確性。選擇抗干擾能力更強(qiáng)的檢測方法至關(guān)重要，重組級聯(lián)試劑（rCR）因采用完整級聯(lián)反應(yīng)路徑，抗干擾性優(yōu)于天然 LAL；單核細(xì)胞活化反應(yīng)測定（MAT）對復(fù)雜基質(zhì)耐受性更高，通過適當(dāng)稀釋即可消除多數(shù)干擾，因此生物制品熱原檢測常采用 “rCR 法（內(nèi)毒素定量）+ MAT 法（全熱原篩查）” 的聯(lián)合方案，既保證內(nèi)毒素檢測的準(zhǔn)確性，又防控非內(nèi)毒素?zé)嵩L(fēng)險(xiǎn)。

MAT 法熱原檢測的穩(wěn)定性需從細(xì)胞、試劑、操作、樣品四維度嚴(yán)格把控。細(xì)胞層面，細(xì)胞活性與純度直接決定熱原響應(yīng)能力，活性不足會減少炎癥因子分泌，純度低則引入雜細(xì)胞干擾；細(xì)胞批次間一致性也關(guān)鍵，TLR 受體表達(dá)、倍增時(shí)間差異會導(dǎo)致結(jié)果波動。試劑與耗材方面，標(biāo)準(zhǔn)品效價(jià)需溯源國際標(biāo)準(zhǔn)，避免降解影響標(biāo)曲；試劑盒中細(xì)胞因子需質(zhì)控，防止外源熱原污染；培養(yǎng)液、緩沖液及無熱原耗材（吸頭、西林瓶）若熱原控制不當(dāng)，易引發(fā)假陽性。操作上，加樣手法要統(tǒng)一（如 8 通道移液器液面一致），孵育需 37℃、5% CO?穩(wěn)定環(huán)境，試劑配制濃度準(zhǔn)確，設(shè)備（酶標(biāo)儀、洗板機(jī)）定期校準(zhǔn)，操作偏差會直接導(dǎo)致異常。樣品層面，自身干擾物質(zhì)（消除炎癥成分、高鹽）、pH 偏離 6-8 或微生物污染，會抑制細(xì)胞活化或引入外源熱原，需針對性預(yù)處理。

熱原檢測技術(shù)自 20 世紀(jì)初問世以來，經(jīng)歷了 “動物試驗(yàn)→體外生化檢測→細(xì)胞生物學(xué)檢測” 的三次關(guān)鍵變革，每一次變革均推動檢測效率、準(zhǔn)確性與全面性的提升。20 世紀(jì)初至中期，熱原檢測方法只有家兔熱原試驗(yàn)，通過觀察家兔體溫變化篩查熱原，雖實(shí)現(xiàn)了廣譜檢測，但存在動物成本高、操作繁瑣、靈敏度低、種屬差異大等局限，難以滿足制藥行業(yè)快速發(fā)展需求。20 世紀(jì) 60 年代，鱟試驗(yàn)法（LAL 法）的發(fā)明開啟了熱原檢測的 “體外生化時(shí)代”，利用鱟血變形細(xì)胞裂解物的凝血級聯(lián)反應(yīng)檢測細(xì)菌內(nèi)毒素，靈敏度提升至 ng 級，檢測時(shí)間縮短至 1-2 小時(shí)，迅速成為制藥行業(yè)常規(guī)質(zhì)控方法；但該方法依賴鱟資源，易受 β- 葡聚糖干擾，且只能檢測內(nèi)毒素，無法覆蓋非內(nèi)毒素?zé)嵩?1 世紀(jì)以來，重組技術(shù)與細(xì)胞生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展推動熱原檢測進(jìn)入 “全熱原管控時(shí)代”：重組級聯(lián)試劑（rCR）與重組 C 因子試劑（rFC）通過基因工程技術(shù)制備，擺脫對鱟資源的依賴，消除葡聚糖干擾，實(shí)現(xiàn)標(biāo)準(zhǔn)化生產(chǎn)；單核細(xì)胞活化反應(yīng)測定（MAT）利用人源單核細(xì)胞檢測全類型熱原，填補(bǔ)非內(nèi)毒素?zé)嵩瓩z測空白，且結(jié)果更貼近人體實(shí)際反應(yīng)。

湖州申科生物MAT試劑盒配套的即用型細(xì)胞，需嚴(yán)格遵循解凍與使用規(guī)范，避免細(xì)胞活性下降影響熱原檢測結(jié)果。首先，解凍操作需快速：從液氮罐或 - 80℃冰箱取出細(xì)胞后，立即放入 37℃水浴鍋快速解凍（約 1-2 分鐘），避免緩慢解凍導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)形成冰晶，損傷細(xì)胞膜；解凍后需立即取出，用 75% 酒精擦拭管外壁消毒，防止污染。其次，細(xì)胞解凍后需一次性使用完畢，不建議按量添加培養(yǎng)基或添加劑后分次使用—即用型細(xì)胞經(jīng)工藝優(yōu)化，活性與濃度已預(yù)調(diào)，分次使用會導(dǎo)致細(xì)胞狀態(tài)不均（如部分細(xì)胞活化、部分休眠），影響熱原反應(yīng)性。使用時(shí)需嚴(yán)格按說明書操作：將解凍后的細(xì)胞直接加入含樣品的微孔板中，無需額外洗滌或稀釋，若樣品為高濃度基質(zhì)，可提前用無熱原培養(yǎng)基稀釋樣品（不超 MVD），但細(xì)胞不可稀釋。此外，解凍后的細(xì)胞需在 30 分鐘內(nèi)完成加樣，避免室溫放置過久導(dǎo)致細(xì)胞活性下降，若無法及時(shí)加樣，需置于 37℃培養(yǎng)箱暫存，但不超過 1 小時(shí)，確保細(xì)胞用于熱原檢測時(shí)處于較好的活性狀態(tài)。

含消除炎癥成分的樣品可能抑制 IL-6 產(chǎn)生，需通過科學(xué)評估排除干擾，確保 MAT 法熱原檢測結(jié)果準(zhǔn)確。根據(jù)藥典要求，若樣品能抑制單核細(xì)胞促炎癥因子釋放，需通過以下步驟驗(yàn)證適用性：首先，選擇樣品 A、2A、4A 倍稀釋（均不超過上限有效稀釋倍數(shù) MVD），避免高濃度消除炎癥成分過度抑制；其次，進(jìn)行供試品加標(biāo)回收率實(shí)驗(yàn)，若回收率在 50%-200% 的合格范圍，說明消除炎癥成分未影響熱原檢測；再對比 “供試品配制的標(biāo)曲” 與 “稀釋液配制的標(biāo)曲”，若兩者 IL-6 檢測值相差在 ±20% 以內(nèi)，表明樣品基質(zhì)對檢測無系統(tǒng)性干擾。例如，某消除炎癥單抗樣品經(jīng) 2 倍稀釋后，加標(biāo)回收率達(dá) 120%，兩種標(biāo)曲 IL-6 值相差 15%，判定可適用 MAT 法。若出現(xiàn)回收率偏低（<50%），可嘗試增加稀釋倍數(shù)（如 8A 倍）或采用熱滅活（若樣品耐熱）去除消除炎癥活性；若仍無法排除干擾，需結(jié)合家兔法進(jìn)行對比驗(yàn)證，避免因消除炎癥成分導(dǎo)致假陰性。