北京生物制品內毒素檢測法規要求
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發布時間:2025-09-29
低內毒素回收(LER)與傳統鱟試劑干擾(抑制 / 增強)在多維度存在差異,準確區分對優化內毒素檢測至關重要。表現上,LER 是內毒素回收率<50%,傳統干擾是反應抑制或增強;成因上,LER 由螯合劑 + 表面活性劑協同或蛋白質電荷結合引發,傳統干擾因 pH、β- 葡聚糖等導致;排除方式上,LER 時間依賴且無法稀釋解決,傳統干擾濃度依賴且可通過稀釋緩解;確認方法上,LER 需通過保存時間研究(HTS),傳統干擾按藥典干擾實驗評估。明確這些區別能幫助企業排查內毒素檢測異常,避免誤將 LER 當作普通干擾處理。
開展細菌內毒素檢測的操作過程,需防止樣品受到外源性污染。北京生物制品內毒素檢測法規要求
當實驗室更換內毒素檢測方法或更換試劑供應商時,需進行方法比對與橋接驗證。比對實驗需選取至少 3批代表性樣品,分別用新舊方法檢測,計算結果相關性(如相關系數 R2≥0.95)和偏差(≤20%)。橋接驗證還需評估新方法的特異性、靈敏度是否與舊方法一致,如確認對高風險樣品(如含 β- 葡聚糖的樣品)的抗干擾能力相當。若方法變更涉及法規申報產品,需將驗證數據納入申報資料,證明變更后方法仍能有效控制內毒素風險,符合 FDA、NMPA 等監管機構對方法變更的合規性要求。
江蘇疫苗內毒素檢測LER現象內毒素工作標準品(CSE)稀釋液配制時渦旋很重要,可使內毒素充分溶解,保證濃度準確。
內毒素檢測方法驗證需覆蓋多項參數,確保方法可靠:線性范圍需包含樣品預期濃度(如 0.01-10 EU/mL),相關系數 R2≥0.98;準確度通過加標回收率評估,應在 50%-200% 范圍內;精密度包括批內和批間精密度,CV 值均應≤15%;檢測限(LOD)需低于產品限值的 1/2(如限值 0.5 EU/mL,LOD 應≤0.25 EU/mL);專屬性需證明無干擾物質影響(如 β- 葡聚糖、蛋白質不引發假陽性)。驗證通過后,方法需經實驗室負責人批準方可使用,且定期需進行一次回顧性驗證,確認方法持續有效。
2024年7月26日,《美國藥典》微生物委員會正式宣布,將第<86>章“使用重組試劑的細菌內毒素測試”納入(USP-NF),該標準定于2025年5月正式生效。這一重要舉措不僅標志著細菌內毒素檢測領域從此正式邁入非動物源試劑的嶄新發展階段,更契合了全球生命科學領域遵循的3R原則(即通過非動物源技術替代動物實驗、減少實驗動物使用量、優化實驗流程以降低動物痛苦)。此前傳統細菌內毒素檢測多依賴從鱟血中提取的試劑,而鱟作為海洋瀕危“活化石”,其資源保護與檢測需求間的矛盾長期存在;如今重組級聯試劑(rCR)憑借技術創新成功替代傳統鱟血,在有效守護藍血鱟的生態未來、緩解資源依賴困境的同時,也為藥品生產中的內毒素質量控制和用藥安全保障,提供了更先進、更穩定且具備長期可持續性的解決方案。
內毒素檢測凝膠法實驗需西林瓶等耗材,確保無外源內毒素污染檢測。
檢測細菌內毒素的堂試劑方法,是一個生物反應過程,受到很多因素的干擾。在一個供試品的檢測方法固定下來之前,為了得到準確的結果,必須要了解供試品與鱟試劑之間的相互關系。供試品中的成分往往非常復雜,而且會干擾試驗檢測系統的功能。很多干擾的機理,并不是非常清楚。但是業界比較能夠接受的理論是,如果供試品中某些因子影響了鱟試劑中蛋白的表達功能,則被認為是干擾作用(Inhibition/Enhancement,V/E)。干擾作用產生的因素較多,一般包括試劑因素(鱟試劑、內毒素標準品)供試品因素(pH值、溫度、離子強度、濃度、水溶性、黏度、可發生鱟試劑反應的非內毒素雜質)和實驗因素(試驗器皿、細菌內毒素檢查用水、鱟試劑抗干擾能力)等。
內毒素檢測方法多樣,影響因素及實驗干擾較多,包括實驗操作步驟、樣品處理等方面。廣東細菌內毒素檢測重組級聯試劑(rCR)
細菌內毒素是革蘭氏陰性菌細胞壁脂多糖,細菌死亡裂解釋放,微量級即致人體發熱、休克等威脅。北京生物制品內毒素檢測法規要求
樣品中的脂質體與表面活性劑,會通過不同機制干擾內毒素檢測,需結合基質特性選擇處理方式。脂質體的干擾體現在兩方面:一是脂質雙分子層會包裹內毒素,使其無法與鱟試劑接觸,導致假陰性;二是脂質體的膠體性質會干擾凝膠形成(凝膠法)或光度信號讀取(濁度 / 顯色法)。針對完整脂質體制劑,可先用生理鹽水稀釋降低脂質體濃度,減少包裹作用;若需徹底釋放內毒素,還可使用 DMSO、乙醇或甲醇等溶劑裂解脂質體,暴露被包裹的內毒素。表面活性劑的干擾則源于其對物質結構的改變:既可能破壞內毒素的聚集體結構,影響其活性;又可能導致鱟試劑中蛋白質變性,抑制反應。對此,可通過內毒素檢查用水或生理鹽水稀釋樣品,降低表面活性劑濃度,消除其對結構的破壞作用。這些針對性處理能有效解決脂質體與表面活性劑的干擾,確保內毒素檢測結果真實可靠。
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